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                                細胞增殖分析(CCK-8 法)

                                發(fā)布時(shí)間: 2022-10-18  點(diǎn)擊次數: 1100次


                                Cell Counting Kit-8(簡(jiǎn)稱(chēng)CCK-8)試劑可用于簡(jiǎn)便而準確的細胞增殖和毒性分析。

                                CCK-8 & MTT 方法比較
                                方法優(yōu)點(diǎn)缺點(diǎn)
                                CCK-8法靈敏度高、不使用有機溶劑、檢測迅速、重復性好價(jià)格較MTT貴、CCK8試劑的顏色為淡紅色、與含酚紅的培養基顏色接近,容易漏加或多加
                                MTT法價(jià)格便宜

                                操作步驟較多,需要使用有機試劑,靈敏度不如CCK-8,多數需要配制,檢測時(shí)間長(cháng),細胞毒性較高


                                原理


                                CCK-8 是 MTT 的升級產(chǎn)品,其基本原理為:該試劑中含有WST-8【化學(xué)名:2-(2-甲氧基-4-硝基苯基)-3-(4-硝基苯基)-5-(2,4-二磺酸苯)-2H-四唑單鈉鹽】,它在電子載體1-甲氧基-5-甲基吩嗪鎓*(1-Methoxy PMS)的作用下被細胞中的線(xiàn)粒體內的脫氫酶還原為具有高度水溶性的黃色甲瓚產(chǎn)物(Formazan dye)。

                                生成的甲瓚物的數量與活細胞的數量成正比,與細胞毒性成反比,間接反映活細胞數量。因此可利用這一特性直接進(jìn)行細胞增殖和毒性分析。


                                用途


                                用于細胞增殖測定、細胞毒性測定、藥物篩選、抗腫瘤藥物敏感性測定。


                                材料與儀器


                                【材料】細胞懸液

                                【試劑】 CCK8

                                【儀器,耗材】96 孔板,二氧化碳培養箱,酶標儀


                                步驟


                                1、取對數生長(cháng)期的細胞制備細胞懸液,細胞計數;

                                2、根據合適的鋪板細胞數接種到 96 孔板中,每孔約 200 ul(2×103-2×104/孔)細胞懸液,同樣的樣本可做 3-5 個(gè)重復,將 96 孔板在 37℃、5%CO2 培養箱中培養 24,48,72 h;

                                3、設置空白對照組:不加細胞只加培養液的空白對照,其他試驗步驟保持一致。細胞接種后貼壁大約需要培養4-8小時(shí);

                                4、加入20ul CCK8:由于每孔加入CCK8 量比較少,有可能因試劑沾在孔壁上而帶來(lái)誤差,建議在加完試劑后輕輕敲擊培養板以幫助混勻?;蛘咧苯优渲煤?10% CCK8 的培養基,以換液的形式加入;

                                5、培養1-4小時(shí):細胞種類(lèi)不同,形成的Formazan的量也不一樣。如果顯色不夠的話(huà),可以繼續培養,以確認最佳條件。特別是血液細胞形成的Formazan很少,需要較長(cháng)的顯色時(shí)間(5-6小時(shí));

                                6、測定 450 nm吸光度:建議采用雙波長(cháng)進(jìn)行測定,檢測波長(cháng) 450-490 nm,參比波長(cháng)600-650 nm。


                                注意事項


                                1、當在培養箱內培養時(shí),培養板最外一圈的孔最容易干燥揮發(fā),由于體積不準確而增加誤差。一般情況下,最外一圈的孔加培養基或者PBS,不作為測定孔用。避免邊緣效應。     

                                2、用酶標儀檢測前需確保每個(gè)孔內沒(méi)有氣泡,否則會(huì )干擾測定,且要擦拭干凈樣品板。

                                3、細胞種板數不易過(guò)多,否則細胞自身發(fā)生接觸抑制,影響OD數值,較長(cháng)培養時(shí)間建議每孔加入200 μl培養基。                                    

                                4.若暫時(shí)不測定OD值,可以向每孔中加入10 μL 0.1M的HCL溶液或者1% w/v SDS溶液,并遮蓋培養板避光保存在室溫條件下。24 小時(shí)內測定,吸光度不會(huì )發(fā)生變化。                 

                                5、懸浮細胞由于染色比較困難,一般需要增加細胞數量和延長(cháng)培養時(shí)間。

                                6、加入CCK-8 時(shí),如果細胞培養時(shí)間較長(cháng),培養基顏色或 pH 值已變化,建議換用新鮮的培養基。


                                常見(jiàn)問(wèn)題


                                Q:96 孔板最邊緣的細胞吸光值都較大?


                                A:這是邊緣效應導致的,長(cháng)時(shí)間培養過(guò)程中,一般邊緣的孔中培養基揮發(fā)較多,培養基中各成分相對濃縮,細胞生長(cháng)會(huì )更快,不能正確反映真實(shí)的細胞生長(cháng)速度,所以需要棄用周?chē)蝗装?,加入培養基或 PBS。


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