銷(xiāo)售熱線(xiàn)

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                                劃痕實(shí)驗(細胞遷移)的實(shí)驗流程及經(jīng)驗分享

                                發(fā)布時(shí)間: 2024-01-12  點(diǎn)擊次數: 286次

                                簡(jiǎn)介:
                                細胞遷移(Cell migration):因其類(lèi)似體外傷口愈合過(guò)程,又名傷口愈合實(shí)驗(Wound healing assay),是指細胞在接收到遷移信號或感受到某些物質(zhì)的梯度后而產(chǎn)生的移動(dòng)??捎糜诳梢杂^(guān)察藥物、基因等外源因素對細胞遷移、修復和相互作用的影響。
                                 

                                原理:
                                在融合的單層細胞上人為制造一個(gè)空白區域,稱(chēng)為“劃痕/傷口",劃痕邊緣的細胞會(huì )逐漸進(jìn)入空白區域使“劃痕/傷口"愈合,于細胞遷移過(guò)程中在開(kāi)始和定期捕獲圖像,通過(guò)測量不同時(shí)間點(diǎn)的劃痕間距并計算差值,可對細胞的遷移能力做出判斷。

                                材料及儀器:
                                耗材:六孔板、馬克筆、直尺、200ul槍頭、PBS、(血清)細胞培養基等。

                                實(shí)驗步驟:

                                1.劃線(xiàn):于六孔板底面,馬克筆順直尺畫(huà)三條橫線(xiàn)作為標記線(xiàn)。

                                2.種板:根據分組種板,細胞密度為5x105個(gè)/孔左右。并務(wù)必鋪勻。

                                3.劃痕:待細胞長(cháng)滿(mǎn)后,用直尺比著(zhù),200ul槍頭垂直于孔板和畫(huà)的標記線(xiàn)劃兩條垂線(xiàn),使劃痕與標記線(xiàn)相交,可以形成若干交叉點(diǎn),作為固定的檢測點(diǎn)。

                                4.清洗:棄去舊培養基,用PBS輕輕潤洗兩到三次,直到劃下來(lái)的細胞沖洗干凈。

                                5.加液:根據分組分別加入加藥培養基或無(wú)血清培養基。

                                6.拍照觀(guān)察:劃痕、清洗、加液完成后,用顯微鏡拍不同倍數的照片,作為0h對照。放入37℃,5%CO2培養箱中培養。在所需時(shí)間點(diǎn)取出細胞,于顯微鏡下觀(guān)察同一位置劃痕寬度并拍照。

                                7.數據分析:一種是統計細胞遷移的距離,一種是統計劃痕面積。都可以用ImageJ軟件來(lái)進(jìn)行分析。

                                注意事項或經(jīng)驗分享:

                                1.直尺和馬克筆等工具用前務(wù)必照紫外消殺。
                                2.種板所用細胞數目可根據細胞的生長(cháng)快慢調整接種數量。保證每組細胞鋪板密度一致,保證每孔務(wù)必鋪勻。
                                3.提前用馬克筆畫(huà)好線(xiàn),避免細胞種板后不好操作。槍頭畫(huà)線(xiàn)之前,不要棄去原培養基,否則劃下來(lái)的細胞團塊會(huì )堆積在劃痕邊緣上堆積導致寬度不統一。
                                4.用槍頭畫(huà)線(xiàn)時(shí),要用力均勻一致,垂直穩定一氣呵成,避免寬度差別較大不利于結果分析的準確性。
                                5.根據交叉點(diǎn)定位拍照,避免了前后觀(guān)察時(shí)位置不固定的問(wèn)題,結果更有說(shuō)服力。
                                6.務(wù)必清洗干凈劃下來(lái)的活細胞,避免在拍照期間細胞貼壁在劃痕處并進(jìn)行增殖影響結果。
                                7.0h拍照時(shí)可以在試驗記錄本上標記拍照位置,以便下各時(shí)間段拍攝同一位置。
                                8.拍照時(shí)注意不要露出馬克筆畫(huà)的線(xiàn)條,不要鏡頭過(guò)于模糊,盡量不要選擇邊緣的光影差別過(guò)大的位置,切換鏡頭時(shí)不要忘記換標尺,否則都會(huì )影響結果的自動(dòng)分析。
                                9.根據細胞種類(lèi),選擇無(wú)血清或低血清培養基來(lái)降低細胞增殖的影響,或用Mitomycin(1μg/ml)處理1h,抑制細胞的分裂,消除增殖的影響。但同時(shí)也會(huì )影響細胞遷移的速度。
                                10.一般拍照時(shí)間為0,2,4,6,8,10,12,16,24小時(shí)等選取,不建議超過(guò)24h,過(guò)度增殖造成實(shí)驗假陽(yáng)性結果。
                                11.手工劃痕可能難以保證寬度一致性,culture Insert是現在市面上也推出的一種可以提前占據劃痕區域的模具,將細胞接種于Dish中間的Insert培養,細胞長(cháng)滿(mǎn)Insert區域后用鑷子移除Insert產(chǎn)生筆直且無(wú)細胞損傷的劃痕。
                                12.分析結果中長(cháng)度法,由于細胞遷移并不是齊頭并進(jìn)的,可能組間差異大,建議用平均多條距離的值來(lái)代表。


                                安培生物致力成為推動(dòng)生命科學(xué)進(jìn)步值得信賴(lài)的合作者

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