銷(xiāo)售熱線(xiàn)
                              
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                                原代小鼠心肌成纖維細胞分離培養方法
                                
                
                                
                  發(fā)布時(shí)間： 2022-10-25　　點(diǎn)擊次數： 758次  
                
                                
                
                                
                 
                                小鼠心肌成纖維細胞的組織來(lái)源于實(shí)驗動(dòng)物的正常心臟組織，心臟是脊椎動(dòng)物身體中最重要的一個(gè)器官，主要功能是提供壓力，把血液運行至身體各個(gè)部分。

                                心臟的作用是推動(dòng)血液流動(dòng)，向器官、組織提供充足的血流量，以供應氧和各種營(yíng)養物質(zhì)，并帶走代謝的終產(chǎn)物（如二氧化碳、無(wú)機鹽、尿素和尿酸等），使細胞維持正常的代謝和功能。
                                心臟中，心肌成纖維細胞約占正常心肌組織細胞總數的60%-70%，是心臟中非心肌細胞的主要組成部分，廣泛存在于心臟組織中，包圍心肌細胞，連接心肌細胞間質(zhì)，與缺血性心臟病、炎癥、肥大、梗死等病理狀態(tài)密切相關(guān)。細胞生長(cháng)方式以長(cháng)梭狀細胞，貼壁培養。
                                小鼠心肌成纖維細胞的方法有很多，賽百慷提供的心肌成纖維細胞分離方法有兩種，一種是貼塊法，一種是消化法，這兩種方法都可以用于分離和培養原代細胞。




                                實(shí)驗器械
                                1.培養皿
                                2.T-25細胞培養瓶
                                3.100目不銹鋼網(wǎng)篩
                                4.200目不銹鋼網(wǎng)篩
                                5.眼科剪
                                6.眼科鑷
                                7.離心管（15ml、50ml）

                                實(shí)驗分離和培養步驟
                                1. 小鼠頸椎脫臼處死后，剃除腹胸部的被毛，放入裝有75%酒精的燒杯中浸泡5min。


                                2. 取出小鼠，在無(wú)菌環(huán)境下打開(kāi)胸腔，取出心臟組織，注入盛有無(wú)菌1×PBS的培養皿中，洗凈組織表面的血液。
                                3. 將清洗干凈的心臟組織轉入裝有75%酒精的培養皿中浸泡15s以殺死大多數的心臟被膜細胞，浸泡完成后立即轉入裝有無(wú)菌1×PBS的培養皿中震蕩清洗。
                                4. 清洗完成后，用剪刀鑷子配合除去主動(dòng)脈弓和心房組織，僅保留心室部分，再次用1×PBS清洗去除心室內的血液。
                                5. 將清洗干凈的心室組織用剪刀減成1mm3大小左右的碎塊，之后用PBS清洗若干次后按下述兩種方法之一進(jìn)行后續操作。     
                                 
                                A.貼塊法


                                6. 將清洗好的碎塊轉入另一培養皿中，用0.25%胰蛋白酶消化液浸泡組織，室溫消化3-5min。
                                7. 消化完成后，添加數毫升FBS終止消化，之后吸棄液體，加PBS清洗組織塊1次后，用200ul吸頭將組織塊平均接種于T-25培養瓶的培養面上，之后將培養瓶放置于37℃二氧化碳培養箱中，靜置2-4h。
                                8. 待組織處于略微脫水的狀態(tài)時(shí)，小心添加2ml完培養基，添加時(shí)注意盡量不要將組織塊沖起，要使培養基接觸所有的組織塊。
                                9. 之后放入培養箱中繼續培養，一般2-4天后成纖維細胞會(huì )從組織塊周?chē)莱?，待爬出的細胞有較多數量時(shí)，可將細胞消化下來(lái)，去除組織塊，轉入另一培養瓶中培養。
                                 
                                B.消化法
                                6. 將清洗好的碎塊轉入另一離心管中，加入混合消化液（0.08%胰酶+0.06%Ⅱ型膠原酶）37℃水浴消化8min后，吸取上層混懸液棄去。
                                7. 余下組織加入混合消化液10ml，37℃水浴震蕩消化10min；吸取上層懸液至另一離心管中，加入適量FBS終止反應；剩余沉淀物再加消化液消化3-5次，直至組織塊消化。
                                8. 按1∶1加入含血清的培養基，中止酶反應，懸液過(guò)150目網(wǎng)篩去除較大的組織塊。
                                9. 收集全部中止后的消化液于離心管中，300g，離心10 min，棄去上清，加入培養液重懸細胞后計活細胞數。
                                10. 調整細胞密度以1× 106個(gè)/ml 接種入的T-25培養瓶中，每瓶添加2ml細胞懸液。
                                11. 培養瓶放置于37℃，5% CO2培養箱中靜置40min后，吸棄上清液以去除未貼壁的非成纖維細胞和死細胞，再添加5ml完培養基繼續培養。


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