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                                免疫組化IHC實(shí)驗經(jīng)驗總結

                                發(fā)布時(shí)間: 2022-03-15  點(diǎn)擊次數: 1024次

                                1、免疫組化實(shí)驗所用的組織和細胞標本有哪些?

                                實(shí)驗所用主要為組織標本和細胞標本兩大類(lèi),前者包括石蠟切片(病理大片和組織芯片)和冰凍切片,后者包括組織印片、細胞爬片和細胞涂片。其中石蠟切片是制作組織標本最為常用、最基本的方法,對于組織形態(tài)保存好,且能作連續切片,有利于各種染色對照觀(guān)察;還能長(cháng)期存檔,供回顧性研究;石蠟切片制作過(guò)程對組織內抗原暴露有一定的影響,但可進(jìn)行抗原修復,是免疫組化中最佳的組織標本制作方法。


                                2、石蠟切片為什么要做抗原修復?有哪些方法?

                                石蠟切片標本均用甲醛固定,使得細胞內抗原形成醛鍵、羧甲鍵而被封閉了部分抗原決定簇,同時(shí)蛋白之間發(fā)生交聯(lián)而使抗原決定簇隱蔽。所以要求在進(jìn)行IHC染色時(shí),需要*行抗原修復或暴露,即將固定時(shí)分子之間所形成的交聯(lián)破壞,而恢復抗原的原有空間形態(tài)。常用的抗原修復方法有微波修復法,高壓加熱法,酶消化法,水煮加熱法等,常用的修復液是pH6.0的0.01 mol/L的檸檬酸鹽緩沖液。



                                3、免疫組化常用的染色方法有哪些?

                                根據標記物的不同分為免疫熒光法,免疫酶標法,親和組織化學(xué)法,后者是以一種物質(zhì)對某種組織成分具有高度親合力為基礎的檢測方法。這種方法敏感性更高,有利于微量抗原(抗體)在細胞或亞細胞水平的定位,其中生物素——抗生物素染色法最為常用。


                                4、石蠟切片在染色過(guò)程中出現脫片現象

                                1)烤片時(shí)間不夠,或溫度不夠,可以延長(cháng)烤片時(shí)間和提高烤片溫度; 

                                2)用含有多聚賴(lài)氨酸的玻片,可以購買(mǎi)到或這自己做;

                                3)有些組織本身就容易掉片,如骨組織等,操作時(shí)沖PBS不要直接沖到組織上,沖到組織上方,讓它流下沖洗組織; 

                                4)用高溫修復時(shí),溫度驟冷也可能引起。 


                                5、邊緣效應

                                1)組織邊緣與玻片粘貼不牢,邊緣組織松脫漂浮在液體中,每次清洗不易將組織下面試劑洗盡所致. 解決辦法:制備優(yōu)質(zhì)的膠片(APES或多聚賴(lài)氨酸),切出盡量薄的組織切片,不厚于4微米,組織的前期處理應規范,盡量避免選用壞死較多的組織;

                                2)切片上滴加的試劑未充分覆蓋組織,邊緣的試劑容易首先變干,濃度較中心組織高而致染色深。解決辦法:試劑要充分覆蓋組織,應超出組織邊緣2mm。用組化筆畫(huà)圈時(shí),為了避免油劑的影響,畫(huà)圈應距組織邊緣3-4mm。

                                 

                                6、產(chǎn)生組織切片非特異性染色

                                1)抗體孵育時(shí)間過(guò)長(cháng)、抗體濃度高易增加背景著(zhù)色。這可通過(guò)縮短一抗/二抗孵育時(shí)間、稀釋抗體來(lái)控制。這是最重要的一條; 

                                2)一抗用多克隆抗體易出現非特異性著(zhù)色,建議試用單克隆抗體看看; 

                                3)內源性過(guò)氧化物酶和生物素在肝臟、腎臟等組織含量很高(含血細胞多的組織),需要通過(guò)延長(cháng)滅活時(shí)間和增加滅活劑濃度來(lái)降低背景染色; 

                                4)非特異性組分與抗體結合,這需要通過(guò)延長(cháng)二抗來(lái)源的動(dòng)物免疫血清封閉時(shí)間和適當增加濃度來(lái)加強封閉效果; 

                                5)DAB孵育時(shí)間過(guò)長(cháng)或濃度過(guò)高; 

                                6)PBS沖洗不充分,殘留抗體結果增強著(zhù)色,在一抗、二抗或SP孵育之后的浸洗尤為重要; 

                                7)標本染色過(guò)程中經(jīng)常出現干片,這容易增強非特異性著(zhù)色。

                                 

                                7、免疫組化染色呈陰性結果

                                1)抗體濃度和質(zhì)量問(wèn)題以及抗體來(lái)源選擇錯誤;   

                                2)抗原修復不全,對于甲醛固定的組織必須用充分抗原修復來(lái)打開(kāi)抗原表位,以利于與抗體結合;建議微波修復用高火4次*6min試試。有人做過(guò)實(shí)驗,這是最佳的時(shí)間和次數。若不行,還可高壓修復; 

                                3)組織切片本身這種抗原含量低;

                                4)血清封閉時(shí)間過(guò)長(cháng);

                                5)DAB孵育時(shí)間過(guò)短;

                                6)細胞通透不全,抗體未能充分進(jìn)入胞內參與反應;

                                7)開(kāi)始做免疫組化,我建議你一定要首先做個(gè)陽(yáng)性對照片,排除抗體等外的方法問(wèn)題。

                                 

                                8、背景

                                1)考慮一抗濃度高;

                                2)然后調整DAB孵育時(shí)間;

                                3)也要考慮血清封閉時(shí)間是否過(guò)短;

                                4)適當增加抗體孵育后的浸洗次數和延長(cháng)浸洗時(shí)間等。



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