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                                ELISA實(shí)驗經(jīng)驗總結

                                發(fā)布時(shí)間: 2024-04-18  點(diǎn)擊次數: 160次

                                前置知識

                                ELISA(Enzyme-Linked Immunosorbent Assay,酶聯(lián)免疫吸附試驗)是一種常用的實(shí)驗技術(shù),用于檢測和定量分析樣品中特定抗原或抗體的存在。ELISA是基于免疫學(xué)原理的一種高靈敏度和高特異性的實(shí)驗方法。


                                ELISA實(shí)驗通常包括以下步驟:


                                1.涂覆:將待檢測的抗原或抗體溶液加入到微孔板(通常是96孔板)中,并在孔板表面上形成一層

                                固定的抗原或抗體。這個(gè)過(guò)程被稱(chēng)為涂覆。


                                2.阻斷:為了防止非特異性結合,需要在涂覆后加入一種阻斷劑,例如牛血清蛋白(BSA)或牛奶粉,以覆蓋孔板上未被固定的表面。阻斷劑可以減少非特異性結合和降低背景信號。


                                3.樣品加入:將待測樣品加入到微孔板中,樣品中的目標抗原或抗體與固定在孔板上的抗體或抗原相互作用。


                                4. 洗滌:通過(guò)反復洗滌孔板,去除未結合的物質(zhì),以減少背景信號


                                5. 探針加入:加入與待測物體特異性結合的酶標記二抗(例如辣根過(guò)氧化物酶-HRP)或酶標記抗原,使其與樣品中的目標物體結合。


                                6. 洗滌:再次洗滌孔板,去除未結合的酶標記物。


                                7. 底物加入:加入一種底物,其與酶標記物相互作用,產(chǎn)生可測量的信號。常用的底物是一種可被酶催化產(chǎn)生顏色或熒光的物質(zhì)。


                                8. 反應停止:通過(guò)加入一種停止劑,停止底物的反應,阻止信號進(jìn)一步增加。


                                9. 信號測量:使用光譜儀或熒光測量?jì)x測量底物反應產(chǎn)生的信號,根據信號的強度來(lái)確定樣品中目標物體的濃度。


                                ELISA是分子生物學(xué)、免疫學(xué)和細胞生物學(xué)研究中常用到的實(shí)驗操作之一,相信大家常常會(huì )有這樣那樣的實(shí)驗問(wèn)題。


                                以下是同學(xué)匯總關(guān)于ELISA實(shí)驗出現空白背景高的常見(jiàn)原因和處理方法的經(jīng)驗心得

                                ELISA實(shí)驗經(jīng)驗總結

                                問(wèn)題:ELISA空白背景高的常見(jiàn)原因和處理方法

                                通常陰性孔吸光光度值不會(huì )超過(guò)0.1。

                                常見(jiàn)原因有以下這些:

                                1)洗板不干凈

                                解決方法:

                                ①充分洗滌:如果洗板的時(shí)間不夠,會(huì )導致抗體殘留,陰性對照會(huì )顯色,嘗試延長(cháng)洗板時(shí)間,增加洗板頻率,在洗液中添加表面活性劑Tween-20。

                                在洗板時(shí)要保證每步都全部洗滌,充分拍板直至孔內沒(méi)有明顯的殘留液體。

                                ②避免交叉污染:棄去洗液和孵育的抗體時(shí)避免交叉污染,移液槍頭盡可能一次性使用,拍板的濾紙不要反復使用。

                                2)顯色液變質(zhì)或者試劑過(guò)期

                                解決方法:檢查試劑盒有效期,或使用新的試劑盒并按照說(shuō)明書(shū)要求保存試劑盒。每次用剩下的顯色液最好不要回收,或者只回收洗凈的容器裝的顯色液。

                                3)試劑稀釋有誤,檢測抗體/酶結合物工作液濃度過(guò)高

                                解決方法:按照說(shuō)明書(shū)推薦的稀釋倍數稀釋抗體。

                                4)試劑盒組分未平衡

                                解決方法:試劑盒每個(gè)組分都需要平衡至室溫后進(jìn)行實(shí)驗。

                                5)混用其他試劑盒試劑

                                解決方法:保證使用試劑盒內完整的一套試劑進(jìn)行實(shí)驗,不同品牌及不同批次間的試劑可能存在不匹配現象,不同批號的試劑不要混用。

                                6)蒸餾水受酶等污染

                                解決方法:使用新鮮蒸餾水。

                                7)培養箱溫度超過(guò)37℃或反應時(shí)間過(guò)長(cháng)

                                解決方法:孵育時(shí)間過(guò)長(cháng)、溫度過(guò)高可能會(huì )導致非特異性結合增加,從而造成本底增高。檢查恒溫箱,確保孵育溫度穩定在37℃,按照說(shuō)明書(shū)的反應時(shí)間進(jìn)行孵育。

                                8)酶標板底部有污漬

                                解決方法:在加完終止液之后,檢測之前,用75%乙醇浸潤的脫脂棉球擦拭酶標板底部,確認沒(méi)有污漬之后再檢測。

                                9)洗液被污染

                                解決方法:洗液現配現用,長(cháng)期放置會(huì )析出,也可能會(huì )污染,導致背景偏高。

                                10)包被的抗原被污染

                                解決辦法:仔細回想操作過(guò)程,換新的抗原包被。

                                11)封閉液、封閉時(shí)間、封閉液的濃度

                                解決辦法:封閉液(BSA)可能會(huì )與抗體產(chǎn)生交叉反應。封閉液的濃度偏低、封閉時(shí)間過(guò)短導致部分封閉,抗體與酶標板結合,可能也會(huì )導致背景偏高,因此可以適當調整封閉液的濃度和時(shí)間以降低背景。

                                12)抗體質(zhì)量差或選擇的抗體不合適

                                解決辦法:抗體質(zhì)量不高,特異性不好可能會(huì )與封閉液(BSA)產(chǎn)生交叉反應,可以用0.8%明膠(明膠不含有血清成分)代替。

                                若選擇多克隆抗體孵育,可能會(huì )與酶標單抗產(chǎn)生交叉反應,導致背景增加,最好選用與酶標單抗同種屬的多克隆抗體。

                                13)酶標儀設置參數有誤

                                解決辦法:檢查酶標儀設置的波長(cháng),不同波長(cháng)下樣品的吸光光度值也會(huì )有很大的差別,按照說(shuō)明書(shū)要求設置參數。

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