銷(xiāo)售熱線(xiàn)

                              19126518388
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                                Real-time PCR實(shí)驗攻略(基本方法二)

                                發(fā)布時(shí)間: 2022-03-11  點(diǎn)擊次數: 2558次

                                材料與儀器

                                 

                                一、關(guān)于Trizol Reagent需要的試劑
                                 
                                1. Chloroform:氯仿 (分析純)
                                 
                                2. Isoproplyl alcohol:異丙醇(分析純)
                                 
                                3. 75% Ethanol(in DEPC-treated water):75%乙醇。要求用分析純無(wú)水乙醇并用0.01%的DEPC處理過(guò)的無(wú)Rnase的水稀釋。
                                 
                                4. RNase-free water:無(wú)Rnase的水。方法是:將DEPC按0.01%(V/V)加在dH2O中500 ml(50 ul),在37 ℃過(guò)夜,并高壓滅菌即得(150 ℃ 3小時(shí))
                                 
                                5. 一次性塑料手套
                                 
                                6. 注意:DEPC有致癌之嫌
                                 
                                7. 抽提出的細胞總RNA干燥后加水50 ul,取10 ul加無(wú)Rnase水990 ul,稀釋100倍成1 ml。于0.5 cm厚的石英比色杯中,以無(wú)Rnase水為對照,在721型紫外分光光度計下檢測,結果應為:A260/280 ratio <1.6。
                                 
                                8. 分離組織10 mg(純組織)加800 ul Trizol試劑。

                                 

                                 

                                步驟

                                 

                                二、DEPC處理方法如下

                                 

                                1. DEPC處理

                                (1)DEPC水:100 ml超純水加入0.2 ml DEPC,充分混勻,高壓滅菌。

                                (2) Tip頭(槍頭). EP管等在提RNA過(guò)程中及做RT時(shí)接觸RNA的器材(包括1 ml. 200 μl. 20 μl Tip頭;EP管和PCR反應管等):用0.1%的DEPC水(1000 ml超純水加入1ml DEPC)37 ℃浸泡過(guò)夜,高壓滅菌。

                                 

                                2. 提取RNA,用DEPC水溶解

                                 

                                3. RT 我是用PCR儀來(lái)控制溫度和時(shí)間的,所以RT是在PCR反應管中作的。

                                 

                                4. 操作過(guò)程中要戴一次性手套,并經(jīng)常換手套。 最好把要直接接觸樣品的東西都用DEPC水處理一下,槍頭盒插好槍頭后,加入1-2 ml的0.1%DEPC水,再滅菌就行了;現在有進(jìn)口的RNASE FREE的槍頭買(mǎi),直接用不用處理的。
                                三、如何消除污染
                                 
                                機器運行完后,取出PCR產(chǎn)物時(shí)不能隨便丟棄,應該用塑料手套或其他打結包好后丟入垃圾桶。
                                 
                                (1) 試劑:mixer盡量分裝,不要原瓶多次取用。
                                 
                                (2) 加樣:原則是DNA最后加,其他試劑按照體積大小從大往小的加。如果是同種引物和探針有多管的話(huà)只是DNA不同,那么采取的方法是算出總體積后加在一個(gè)管子里面,混合均勻之后再分裝到各個(gè)管子里去,這樣可以有效地避免誤差及污染。 另外,普通實(shí)驗室容易污染,且污染程度很高,與跑電泳還有質(zhì)粒制備提取都在同一個(gè)房間里有比較大的關(guān)系,最容易造成高濃度污染的就是產(chǎn)物的開(kāi)蓋和質(zhì)粒的稀釋。 目前,國內外各個(gè)公司提供的診斷試劑盒大多采用了UNG來(lái)防污染。Uracil-DNA N-glycosylase(UNG)尿嘧啶DNA糖基酶,來(lái)源于大腸桿菌重組克隆表達。
                                 
                                四、RNA定量
                                 
                                RNA也最好至少要用電泳,一方面定量,另一方面可以看看完整性。至于用分光光度計比較不同標本之間就更不準了。 RNA的貯藏,最主要的是溫度,-20不夠,最好-80,液氮最保險 mRNA是不能代替蛋白水平的分析的,因為還有翻譯效率和RNA降解速度的影響。
                                 
                                五、RT-PCR有兩種做法
                                 
                                條件具備的話(huà)可用kit進(jìn)行一步法進(jìn)行;若條件不太好的話(huà)可分兩步進(jìn)行逆轉錄再PCR。但后來(lái)發(fā)現兩步法的結果更加理想,條帶特異性強且無(wú)拖尾現象,我推測是體系更加單一比較利于PCR的進(jìn)行 一定要做內參的,每一次,我想。不作內參的結果是不可信的 電泳可以不一起跑,沒(méi)有關(guān)系,計算的是相對表達程度,半定量和定量RT-PCR做的都是基因相對表達量,不是絕對表達量。
                                 
                                六、mRNA的分離與純化
                                 
                                步驟(4)中將RNA溶液置65 ℃中溫育然后冷卻至室溫再上樣的目的有兩個(gè),一個(gè)是破壞RNA的二級結構,尤其是mRNA Poly(A+)尾處的二級結構,使Poly(A+)尾充分暴露,從而提高Poly(A+)RNA的回收率;另一個(gè)目的是能解離mRNA與rRNA的結合,否則會(huì )導致rRNA的污染。所以此步驟不能省略。
                                 
                                七、下面,我們介紹一個(gè)可以確認RNA溶液中有沒(méi)有殘留的RNA酶的方法:
                                 
                                保溫試驗方法很簡(jiǎn)單的,按照樣品濃度,從RNA溶液中吸取兩份1 000 ng的RNA加入至0.5 ml的離心管中,并且用pH7.0的Tris緩沖液補充到10 ul的總體積,然后密閉管蓋。把其中一份放入70 ℃的恒溫水浴中,保溫1 h。另一份放置在-20 ℃冰箱中保存1 h。 時(shí)間到了之后,取出兩份樣本進(jìn)行電泳。電泳完成后,比較兩者的電泳條帶。如果兩者的條帶一致或者無(wú)明顯差別(當然,它們的條帶也要符合方法2中的條件), 則說(shuō)明RNA溶液中沒(méi)有殘留的RNA酶污染,RNA的質(zhì)量很好。相反的,如果70 ℃保溫的樣本有明顯的降解,則說(shuō)明RNA溶液中有RNA酶污染。
                                 
                                八、PCR污染與對策
                                 
                                1.  PCR擴增產(chǎn)物污染
                                 
                                這是PCR反應中最主要常見(jiàn)的污染問(wèn)題,所以,擴增區的儀器什么如槍頭等要注意。 還有一種容易忽視,最可能造成PCR產(chǎn)物污染的形式是氣溶膠污染;在空氣與液體面摩擦時(shí)就可形成氣溶膠,在操作時(shí)比較劇烈地搖動(dòng)反應管,開(kāi)蓋時(shí)、吸樣時(shí)及污染進(jìn)樣槍的反復吸樣都可形成氣溶膠而污染.據計算一個(gè)氣溶膠顆??珊?8000拷貝,因而由其造成的污染是一個(gè)值得特別重視的問(wèn)題。
                                 
                                1)標本處理區,包括擴增摸板的制備;
                                 
                                2)PCR擴增區,包括反應液的配制和PCR擴增;
                                 
                                3)產(chǎn)物分析區,凝膠電泳分析,產(chǎn)物拍照及重組克隆的制備。
                                 
                                各工作區要有一定的隔離,操作器材專(zhuān)用,要有一定的方向性。如:標本制備→PCR擴增→產(chǎn)物分析→產(chǎn)物處理。 切記:產(chǎn)物分析區的產(chǎn)物及器材不要拿到其他兩個(gè)工作區。 使用一次性吸頭,嚴禁與PCR產(chǎn)物分析室的吸頭混用,吸頭不要長(cháng)時(shí)間暴露于空氣中,避免氣溶膠的污染; 操作多份樣品時(shí),制備反應混合液,先將dNTP、緩沖液、引物和酶混合好,然后分裝,這樣即可以減少操作,避免污染,又可以增加反應的精確度。
                                 
                                2.  反應液污染 可采用下列方法之一處理:
                                 
                                1)DNase I法:PCR混合液(未加模板和Taq聚合酶)加入0.5 U DNase I,室溫反應30 min后加熱滅活,然后加入模板和Taq聚合酶進(jìn)行正常PCR擴增。該方法的優(yōu)點(diǎn)是不需要知道污染DNA的序列;
                                 
                                2)尿嘧啶糖苷酶(UNG)法 由于UV照射的去污染作用對500 bp以下的片段效果不好,而臨床用于檢測的PCR擴增片段通常為300 bp左右,因此UNG的預防作用日益受到重視和肯定。
                                 
                                a、提取mRNA時(shí)所用的EP管、玻璃等器皿全部都要用0.1%DEPC水浸泡。然后烘干,高壓滅菌,再烘干。
                                 
                                b、用DEPC水洗過(guò)后當然不能用雙蒸水洗了。那你用DEPC處理還有什么意義呢?還要用雙蒸水洗嗎?
                                 
                                c、玻璃器皿干烤:180度,8小時(shí)或更長(cháng)時(shí)間;小器皿也可以用少許氯仿處理一下。另外,鐵制品、研砵等也可倒上酒精直接燒。
                                 
                                RNA提取
                                 
                                一、RNA提取前的準備
                                 
                                1.  研缽的處理
                                 
                                1) 自來(lái)水反復沖洗;
                                 
                                2) 去污劑或者洗滌靈沖洗;
                                 
                                3) 自來(lái)水反復沖洗;
                                 
                                4) 蒸餾水浸泡1~2d;
                                 
                                5) 超凈工作臺內用無(wú)水乙醇沖洗2~3遍,晾干。(在RNA提取前,紫外殺菌10min)
                                 
                                2.  槍頭及EP管的處理
                                 
                                1) 0.1%DEPC水浸泡1~2w;
                                 
                                2) 用鑷子夾起槍頭一一裝入槍頭盒中,用鑷子夾起EP管放入飯盒中;
                                 
                                3) 高壓滅菌50min,45度烘箱烘干。
                                 
                                二、RNA的提取
                                 
                                Trizol法適用于人類(lèi)、動(dòng)物、植物、微生物的組織或培養細菌,樣品量從幾十毫克至幾克。用Trizol法提取的總RNA*蛋白和DNA污染。 RNA可直接用于Northern斑點(diǎn)分析,斑點(diǎn)雜交, Poly(A)+分離,體外翻譯,RNase封阻分析和分子克隆。
                                 
                                在收集到生物材料之后,最好能即刻進(jìn)行RNA制備工作。若需暫時(shí)儲存,則應以液氮將生物材料急速冷凍后,儲存于-80 ℃冷凍柜。在制備RNA時(shí),將儲存于冷凍柜的材料取出,立即以加入液氮研磨的方式打破細胞,不可以先行解凍,以避免RNase的作用。
                                 
                                1.  將組織在液N中磨成粉末后,再以50-100 mg組織加入1 ml Trizol液研磨,注意樣品總體積不能超過(guò)所用Trizol體積的10%;提取細胞RNA時(shí),先離心沉淀細胞,每5-10×106個(gè)細胞加1 ml Trizol后,反復用槍吹打或劇烈振蕩以裂解細胞;
                                 
                                2.  將上述組織或細胞的Trizol裂解液轉入EP管中,在室溫15~30 ℃下放置5分鐘;然后以每1 mlTrizol液加入0.2 ml的比例加入氯仿,蓋緊離心管,用手劇烈搖蕩離心管15秒。 在室溫下(15 ℃~30 ℃)放置2~3分鐘后,12000 g(2 ℃~8 ℃)離心15分鐘;
                                 
                                3.  取上層水相(離心后,混合物將分離為底層為淺紅的、中層為酚-氯仿相、上層為無(wú)色的水相。RNA包含在水相中,水相的體積約相當于所加的Trizol試劑量的60%)于一新的離心管,按每1 mlTrizol液加0.5 ml異丙醇的比例加入異丙醇,室溫(15 ℃~30 ℃)放置10分鐘,12000 g(2 ℃~8 ℃)離心10分鐘。
                                 
                                4.  棄去上清液(RNA沉淀為一層如凝膠樣透明的小塊附在管底和管壁),按每1 ml Trizol液加入至少1 ml的比例加入75%乙醇進(jìn)行洗滌,渦旋混勻,4 ℃下7500 g離心5分鐘。
                                 
                                5.  小心棄去上清液,讓沉淀的RNA在室溫下自然干燥或真空干燥5-10分鐘,注意不要干燥過(guò)分,否則會(huì )降低RNA的溶解度。
                                 
                                6.  加適量Rnase-free water 溶解RNA沉淀(60 ℃ 10 min)。-70 ℃保存備用。
                                 
                                7.  RNA可進(jìn)行mRNA分離,或貯存于70%乙醇并保存于-70 ℃。
                                 
                                [注意]
                                 
                                1.  整個(gè)操作要帶口罩及一次性手套,并盡可能在低溫下操作。另外,提取上清這步一定要小心,靠近沉淀的部分一定要舍得不要,要不然會(huì )有蛋白質(zhì)污染,影響比值。
                                 
                                2.  加氯仿前的勻漿液可在-70 ℃保存一個(gè)月以上,RNA沉淀在70%乙醇中可在4 ℃保存一周,-20 ℃保存一年。
                                 
                                在實(shí)驗過(guò)程中要防止RNA的降解,保持RNA的完整性。在總RNA提取過(guò)程中注意避免mRNA 的斷裂;取2 ug進(jìn)行RNA檢測,如果存在DNA污染時(shí),要用DNase I進(jìn)行消化(因為在處理過(guò)程中RNA極易降解,建議體系中加入適量RNA酶抑制劑。

                                 

                                注意事項

                                 

                                北京協(xié)和醫學(xué)院阜外心血管病醫院心外科心血管病國家重點(diǎn)實(shí)驗室吳益和分享
                                 
                                實(shí)驗中必須堅持的一些好習慣
                                 
                                1. 加入試劑之前,把它混勻一下,以免放置時(shí)間長(cháng)了濃度不均。
                                 
                                2. 移液槍用完之后要歸到最大計量的位置,防止久而久之彈簧失去彈性。
                                 
                                3. 所有的試劑都自己配,出了問(wèn)題才好找原因一. 防止RNA酶污染的措施。
                                 
                                一、防止RNA酶污染的措施
                                 
                                1. 所有的玻璃器皿均應在使用前于180 ℃的高溫下干烤6 h或更長(cháng)時(shí)間。
                                 
                                2. 塑料器皿可用0.1% DEPC水浸泡或用氯仿沖洗(注意:有機玻璃器具因可被氯仿腐蝕,故不能使用)。
                                 
                                3. 有機玻璃的電泳槽等,可先用去污劑洗滌,雙蒸水沖洗,乙醇干燥,再浸泡在3% H2O2 室溫10 min,然后用0.1% DEPC水沖洗,晾干。
                                 
                                4. 配制的溶液應盡可能的用0.1% DEPC,在37 ℃處理12 h以上。然后用高壓滅菌除去殘留的DEPC。不能高壓滅菌的試劑,應當用DEPC處理過(guò)的無(wú)菌雙蒸水配制,然后經(jīng)0.22 μm濾膜過(guò)濾除菌。
                                 
                                5. 操作人員戴一次性口罩. 帽子. 手套,實(shí)驗過(guò)程中手套要勤換。
                                 
                                6. 設置RNA操作專(zhuān)用實(shí)驗室,所有器械等應為專(zhuān)用。
                                 
                                動(dòng)植物總RNA提取-Trizol法
                                 
                                Trizol法適用于人類(lèi). 動(dòng)物. 植物. 微生物的組織或培養細菌,樣品量從幾十毫克至幾克。用Trizol法提取的總RNA*蛋白和DNA污染。 RNA可直接用于Northern斑點(diǎn)分析,斑點(diǎn)雜交, Poly(A)+分離,體外翻譯,RNase封阻分析和分子克隆。
                                 
                                在收集到生物材料之后,最好能即刻進(jìn)行RNA制備工作。若需暫時(shí)儲存,則應以液氮將生物材料急速冷凍后,儲存于-80 ℃冷凍柜。在制備RNA時(shí),將儲存于冷凍柜的材料取出,立即以加入液氮研磨的方式打破細胞,不可以先行解凍,以避免RNase的作用。
                                 
                                1. 將組織在液N中磨成粉末后,再以50-100 mg組織加入1 ml Trizol液研磨,注意樣品總體積不能超過(guò)所用Trizol體積的10%;提取細胞RNA時(shí),先離心沉淀細胞,每5-10×106個(gè)細胞加1 ml Trizol后,反復用槍吹打或劇烈振蕩以裂解細胞; 2. 將上述組織或細胞的Trizol裂解液轉入EP管中,在室溫15~30 ℃下放置5分鐘;然后以每1 mlTrizol液加入0.2 ml的比例加入氯仿,蓋緊離心管,用手劇烈搖蕩離心管15秒。 在室溫下(15 ℃~30 ℃)放置2~3分鐘后,12 000 g(2 ℃~8 ℃)離心15分鐘; 3. 取上層水相(離心后,混合物將分離為底層為淺紅的. 中層為酚-氯仿相. 上層為無(wú)色的水相。RNA包含在水相中,水相的體積約相當于所加的Trizol試劑量的60%)于一新的離心管,按每1 mlTrizol液加0.5 ml異丙醇的比例加入異丙醇,室溫(15 ℃~30 ℃)放置10分鐘,12 000 g(2 ℃~8 ℃)離心10分鐘?!救绻M蛛xDNA或蛋白質(zhì),保留中層和下層酚-氯仿相,有機相能保存在4°C一夜】
                                 
                                4. 棄去上清液(RNA沉淀為一層如凝膠樣透明的小塊附在管底和管壁),按每1 ml Trizol液加入至少1 ml的比例加入75%乙醇進(jìn)行洗滌,渦旋混勻,4 ℃下7 500 g離心5分鐘【RNA能夠在-20 °C保存在75%乙醇中至少1年,4°C保存至少1周】
                                 
                                5. 小心棄去上清液,讓沉淀的RNA在室溫下自然干燥或真空干燥5-10分鐘,注意不要干燥過(guò)分,否則會(huì )使RNA失去溶解性,導致A260/280 ratio <1.6。
                                 
                                6. 加適量Rnase-free water 溶解RNA沉淀,用槍頭反復吸取混勻,55-60 ℃水浴10-15 min。進(jìn)行下游實(shí)驗或-70 ℃保存備用。
                                 
                                7. RNA可進(jìn)行mRNA分離,或貯存于70%乙醇并保存于-70 ℃。
                                 
                                預計的總RNA產(chǎn)量:
                                 
                                [注意]
                                 
                                1. 整個(gè)操作要帶口罩及一次性手套,并盡可能在低溫下操作。另外,提取上清這步一定要小心,靠近沉淀的部分一定要舍得不要,要不然會(huì )有蛋白質(zhì)污染,影響比值 2. 加氯仿前的勻漿液可在-70 ℃保存一個(gè)月以上,RNA沉淀在70%乙醇中可在4 ℃保存一周,-20 ℃保存一年。

                                 

                                 

                                同實(shí)驗其他方法

                                實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)

                                一、 樣品RNA的抽提 1. 取凍存已裂解的細胞,室溫放置5分鐘使其*溶解。 2. 兩相分離 每1 ml的TRIZOL試劑裂解的樣品中加入0.2 ml的氯仿,蓋緊管蓋。手動(dòng)劇烈振蕩管體15秒后

                                Real-time PCR實(shí)驗攻略(基本方法一)

                                實(shí)時(shí)熒光定量PCR(Real-Time PCR)實(shí)驗流程一、RNA的提取(詳見(jiàn)RNA提取及反轉錄)不同組織樣本的RNA提取適用不同的提取方法,因為Real-Time PCR對RNA樣品的質(zhì)量要求較高

                                 

                                以上就是本期的內容,更多資訊,歡迎點(diǎn)擊安培生物網(wǎng)站鏈接了解更多技術(shù)與產(chǎn)品資訊。

                                 

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